Органы мочевыделения.Изготовление почек домашнего животного.

От последней отходит каудальная пузырная артерия, являющаяся основным сосудом мочевого пузыря. Она подходит ветвями первого порядка к шейке мочевого пузыря и распространяется в каудальной его трети, делится дихотомически и васкуляризирует ветвями второго порядка краниальную треть тела мочевого пузыря и его верхушку. Кровоснабжение мочеиспускательного канала.У самцов источником кровоснабжения мочеполового канала служит предстательная артерия и ветви внутренней срамной артерии. Предстательная артерия, отдав ветви к прямой кишке и мочевому пузырю, отделяет артерию мочеполового канала, которая у собачьих направляетсявдоль тазовой части мочеполового канала до средней его трети. У самок источником кровоснабжения мочеиспускательного канала служит вентральная промежностная и влагалищная артерии. Эти артерии отдают от двух до шести ветвей в стенку органа, из которых более тонкие анастомозируют между собой.Изготовление анатомического препарата.Для изготовления почки, как анатомического препарата, используют различные методики. Приготовление влажных препаратов состоит из трех последовательных этапов: 1. Фиксация в формалино-солевом растворе (первая жидкость), в котором гемоглобин крови переходит в метгемоглобин. Почки при этом принимают серо-бурую окраску. 2. Восстановление естественной окраски препарата в спирте (вторая жидкость). 3. Окончательное хранение препарата в глицериновой смеси (третья жидкость). Из всех предложенных жидкостей для фиксации препаратов наиболее часто применяются в ветеринарной и медицинской патологоанатомической практике жидкости Мельникова-Разведенкова, Кайзерлинга, Иореса.ФиксацияФиксатор Мельникова-Разведенкова- формалин 100 мл- хлорид калия 5 г- ацетат калия или натрия 30 г- вода водопроводная 1000 млФиксатор Кайзерлинга- формалин 200 мл- нитрат калия (селитра) 15 г- ацетат калия 30 г- вода водопроводная 1000 млФиксатор Иореса- формалин 100 мл- сульфат натрия 20 г- хлорид натрия (поваренная соль) 10 г- сульфат магния 20 г- вода водопроводная 900 млДля приготовления указанных фиксирующих жидкостей вода берется обычная водопроводная. Общим для всех жидкостей является то, что они сохраняют на продолжительное время способность ткани к восстановлению окраски. При выборе фиксирующей жидкости руководствуются тем, что слабые по концентрации растворы формалина обладают глубоким проникающим действием и поэтому они лучше для фиксации больших по размеру объектов. (4. С. 31)Там, где необходимо сохранение окраски препарата используют жидкость Кайзерлинга, как наиболее высокую по концентрации формалина. В тех случаях, когда окраска имеет второстепенное значение, а орган крупный по размеру, показаны фиксирующие раствора с меньшей концентрацией формалина (Мельникова-Разведенкова, Иореса и др.) Первая жидкость пригодна для многократного использования. Через нее можно провести несколько препаратов. В первой формалиновой жидкости препарат фиксируют до прекращения стекания красноватой жидкости. По окончании фиксации целесообразно сделать надрез ткани или самой почки с внутренней стороны и убедиться, в том, что вся ткань приобрела серо-бурую окраску и плотную консистенцию, а значит зафиксировалась. При фиксации крупных объектов необходимо перед погружением их в фиксирующую жидкость дополнительно надрезать в малозаметных местах. В разрезы нужно вставить ватные или марлевые тампоны. Наряду с разрезами, для сохранения крупных объектов и, главным образом, их внешнего вида прибегают также к впрыскиванию (при помощи шприца) фиксирующего раствора в толщу органа. Такое впрыскивание делают на целой почке при сохраненной капсуле и притом как до помещения препарата в фиксатор, так и после, спустя несколько дней. Должно заметить, что впрыскивание фиксатора в толщу органа не всегда надежно в смысле полной фиксации глубоко расположенных тканей. Для сохранения внешнего вида больших объектов иногда прибегают и к удалению центральных, а потому плохо фиксирующихся участков органа путем выскабливания (острой ложкой) через широкое окно, сделанное на стороне препарата, не подлежащей демонстрации. Такое выскабливание, как правило, делают после того, как препарат пролежал в фиксирующей жидкости не менее 3-5 дней. Образовавшуюся полость заполняют сухой ватой, а затем орган вновь помещают в фиксирующую жидкость, добиваясь хорошей фиксации сохранившегося периферического слоя. Богатые кровью органы, в целях наиболее полного восстановления окраски, желательно фиксировать в крепких формалин-солевых растворах.Для наливки пользуются большими шприцами Жанэ. Первое и основное правило при изготовлении музейных препаратов – это избегать всякого обмывания органов водой. Перед тем, как поместить препарат в фиксирующую среду, его необходимо соответствующим образом подготовить.1. Объект тщательно препарируют, удаляя все лишнее и максимально отчетливо выявляя детали патологического процесса; делают разрезы и придают желательное для демонстрации положение. Качество наливки органа будет выше, если фиксатор вводить попеременно сначала через один сосуд (артерию), потом через другой (вену). 2. Различные полости, трубчатые образовании, каналы и свищи заполняют сухой ватой, а где нужно ставят деревянные или стеклянные распорки. Только после такой подготовки препарат помещают в фиксирующую жидкость. Надо помнить, что нельзя делать никаких сколько-нибудь значительных исправлений в препарате после того, как он пробыл в фиксаторе хотя бы 1-2 дня. Для достижения хороших результатов фиксации необходимо соблюдать следующие условия: 1. Объем фиксирующей жидкости должен в 5-10 раз превышать объем препарата. 2. Нельзя допускать контакта фиксируемых препаратов со стенками посуды, а потому их обязательно кладут на вату, изолируя при этом и от боковых стенок. 3. Препарат должен лежать в жидкости совершенно свободно. Если в одну и ту же посуду приходится помещать сразу несколько объектов, их обязательно перекладывают ватой и располагают таким образом, чтобы они не оказывали друг на друга значительного давления. 4. Препараты, всплывающие на поверхность жидкости, покрывают ватой или сложенной в несколько слоев марлей, которые предварительно смачивают фиксирующей жидкостью. 5. Фиксирующая жидкость должна быть совершенно прозрачной; при окрашивании кровью, помутнении и загрязнении ее заменяют свежей. Через 1-2 дня после пребывания препарата в фиксаторе можно извлекать все посторонние предметы, введенные в полости, каналы и трубчатые образования.Время пребывания препаратов в формалино-солевом растворе весьма различно и зависит от многих условий: величины и плотности объекта, количества и глубины сделанных разрезов и надрезов, свежести и крепости фиксатора, температуры. Такой орган как почки (нормальных размеров или немного увеличенные и обязательно разрезанные) – от 3-4 и до 7 дней. Для того, чтобы препарат не задерживался излишне долго в фиксирующей среде, необходим постоянный контроль за ходом фиксации. Критерием достаточной фиксации служит равномерное уплотнение объекта и отсутствие на контрольном разрезе красноватых и розовых участков; с поверхности разреза не должно выдавливаться кровянистой жидкости. Передержка препарата в фиксаторе может в дальнейшем неблагоприятно отразиться на качестве восстановления окраски.Время фиксации препаратов в первой жидкости различно и зависит от многих условий: величины и плотности объекта, количества и глубины сделанных надрезов, крепости фиксатора, температуры в помещении.Почки достаточно выдержать в фиксирующей жидкости до 7 дней. Передержка препаратов в первой жидкости может неблагоприятно отразиться на качестве восстановления окраски.Замечания по разрезамПочки. Почки, как правило, разрезают во фронтальной плоскости от выпуклой поверхности и по направлению к воротам органа. Полученные в результате такого разреза части (половины) должны держаться только на лоханке. Препарат фиксируют в развернутом виде. Если имеют в виду одновременно демонстрировать и выпуклую поверхность органа, и поверхность разреза его, то орган полностью разделяют на две половины, разрезая и лоханку. Примерные сроки фиксации при нормальных и немного увеличенных размерах органа составляют 3-5 дней. Мочевой пузырь. Вскрывают по передней стенке (от шейки и до дна), вскрытую полость заполняют сухой ватой. Для фиксации собственно пузыря достаточно 1-го дня.Восстановление естественной окраскиПосле фиксации в первой жидкости препарат промывают в водопроводной проточной воде (от 10 минут до 12 часов, смотря по величине органа) и переносят во вторую жидкость (96% этиловый спирт) для восстановления цвета. Восстановление цвета наступает быстро (1-2 часа, а для крупных объектов – 3-6 часов). Как только орган принял свою естественную окраску, обработку спиртом прекращают. Не следует задерживать препарат в спирте более 12-18 ч. При длительном нахождении в спирте препарат постепенно обесцвечивается, вследствие извлечения из тканей нейтрального гематина. Использование более слабых по концентрации спиртов и денатуратов, особенно окрашенных, дает неудовлетворительные результаты. При недостатке спирта восстановление можно вести в обильно смоченной в спирте вате, в которую заворачивают препарат. При этом время восстановления окраски увеличивается.Окончательное хранение препаратов Для окончательного хранения препаратов используют смеси, содержащие глицерин (третья жидкость). В ветеринарной и медицинской практике применяют следующие смеси:Мельникова-Разведенкова: - глицерин 600 мл - ацетат калия или натрия 400 г - вода водопроводная 1000 мл Кайзерлинга- глицерин 200-350 мл - ацетат калия или натрия 200-800 г - вода водопроводная 1000 мл Иореса - глицерин 500 мл - вода 500 мл Приведенные глицериновые смеси готовят на горячей (кипяченной) водопроводной воде. Для предотвращения образования плесени и помутнения в эти смеси добавляют немного (на кончике скальпеля) камфоры или тимола. При перенесении препарата из спирта в третью жидкость она иногда несколько мутнеет, а поэтому рекомендуется первоначально препарат переносить в старую, бывшую в употреблении третью жидкость на несколько дней (10-14). По истечении этого срока препарат переносят в свежеприготовленную третью жидкость. Если третья жидкость даже при повторной ее смене краснеет, значит фиксация препарата была недостаточной, в этом случае следует препарат снова поместить в спирт, а затем в первую жидкость и повторить весь цикл консервирования. Пропитывание в третьей жидкости проводят в темноте, для чего посуду покрывают темной тканью или клеенкой. Пропитывание продолжается довольно долго. Тонкостенные органы пропитывают 1-2 недели, остальные органы не менее 3-5 недель. После этого препарат подлежит окончательной заделке.Монтаж влажных препаратовДля хранения влажных патологоанатомических препаратов используют различной формы музейные банки. Они должны быть прозрачными, не искажать цвет и форму органа, без возможных пузырей и закрываться специально вырезанными стеклами. Помещаемый в банку препарат, прикрепляют нитками к специально вырезанной стеклянной пластинке. Последняя должна быть такой же ширины, как банка, намеченная для данного препарата, а по высоте несколько ниже. Банку заполняют свежеприготовленной третьей жидкостью, добавляют немного тимола или камфоры, или сверху наслаивают на жидкость тонкий слой вазелинового масла. Затем банку закрывают стеклянной крышкой, которую приклеивают эпоксидной смолой, клеем «Момент», силиконовой замазкой или другими современными клеями. На приготовленный препарат наклеивают табличку с названием препарата. Препараты внутренних органов готовят и другими способами: путем высушивания после фиксации на ветру, в сушильном шкафу или в сухом помещении. Существует метод вымораживания зафиксированных органов. Препараты полостных органов также готовят методом высушивания, предварительно надувая их; фиксированные препараты также набивают опилками, стружками или ватой и затем высушивают. Сосуды, бронхиальное дерево наливают специальными массами, затем органическую составляющую удаляют в растворе кислоты. ЗаключениеВыделительная система организма животного представлена почками. В процессе жизнедеятельности из организма выделяются конечные продукты обмена, вода, органические и неорганические вещества, т.ж. почки регулируют артериальное давление. Почки являются парным органом, покрыты капсулой. Паренхима органа состоит из коркового и мозгового слоев. Функциональной единицей почек является нефрон, в котором происходит фильтрация крови и образование мочи. Процесс фильтраций происходит в почечном клубочке, состоящем из эндотелия, базальной мембраны и эпителиальных клеток.На основе изученных данных можно сделать следующие выводы: Выделение — одна из функций обмена веществ, благодаря которой из организма выводятся продукты распада и вредные вещества. Выделительная система есть не у всех животных. Мелкие животные выделяют ненужные и токсичные вещества за счет диффузии через поверхность тела.Эволюция системы выделения у животных шла в направлении создания специализированных органов, обеспечивающих выведение из организма образующихся в процессе жизнедеятельности конечных продуктов распада, а иногда просто токсических веществ. Основное направление эволюции органов выделения у животных — переход от протонефридиев к метанефридиям у беспозвоночных, от них — к туловищным, а затем к тазовым почкам позвоночных.Выделительная система состоит из парных почек бобовидной формы и мочеточников, непарных — мочевого пузыря и мочеиспускательного канала. В почках из крови отфильтровываются конечные продукты обме­на веществ и избыточная вода, которые выводятся из организма.Кровоснабжение почек у изученных пушных зверей осуществляется правой и левой почечными артериями, отходящими от брюшной аорты, которые вблизи ворот почек делятся на дорсальные и вентральные ветви.Венозное русло почек начинается из капиллярной сети, окружающей извитые канальцы. Дальнейший отток крови происходит через венулы, междольковые, дуговые и междолевые вены. Источниками кровоснабжения мочеточников являются ветви почечных и каудальных пузырных артерий. Кровоснабжение мочевого пузыря осуществляется каудальной пузырной артерией. Внутриорганные артерии мочевого пузыря имеют различную степень извилистости и образуют в стенках органа густые поверхностные и глубокие сети с петлями полигональной формы. Иннервация почек осуществляется за счет нервных ветвей, отходящих от почечных сплетений, образованных ветвями чревного, межбрыжеечного сплетений и ветвями малых внутренностных нервов.Мочеточники и мочевой пузырь иннервируются ветвями почечного, межбрыжеечного и тазового сплетений, а также вентральными ветвями подчревных нервов.Список использованных источников1. Катуранова, П.Н Практикум по физиологии сельскохозяйственных животных[Текст] //. Минск: Ураджай, 2000, - С. 44-602. Георгиевский, В.И. Физиология сельскохозяйственных животных. - Москва: Агропромиздат, 1990, - С. 12-173. Георгиевский, В.И. Практическое руководство по физиологии сельскохозяйственных животных[Текст] //. Москва: высшая школа, 1976, - С. 16-244. Физиология сельскохозяйственных животных под редакцией А.И. Голикова, [Текст] //. - Москва, 1991, - С. 47-555.Уша, Б. В. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных / Б. В. Уша, И. М. Беляков, Р. П. Пушкарев. [Текст] //. - М.: Колос, 2004 –С. 487 6.Васильев, М.Ф. Практикум по клинической диагностике болезней животных [Текст] //. М. Ф. Васильев, Е. С. Воронина. - М.: Колос, 2004 -С. 269 7. Болезни почек: учеб. пособие / В.А. Колесников, Э.А. Петрова, Т.К. Гриценко [и др.]; Краснояр. гос. аграр. ун-т. – Красноярск, 2008. –С. 1368. Практикум по клинической диагностике болезней животных / М.Ф. Васильев, Е.С. Воронин, Г.Л. Дугин [и др.]. – М.: Колос, 2004. – С. 2699. Воронин, Е.С. Клиническая диагностика с рентгенологией / Е.С. Воронин. – [Текст] //М, 2006. – С. 50910. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных: учебник / под ред. С.П. Ковалева, А.П. Курдеко, К.Х. Мурзагулова. – СПб.: Лань, 2014. – С. 544 11. Кондрахин, И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики [Текст] // И.П. Кондрахин. – М.: КолосС, 2004. – С. 52012. Кондрахин, И.П. Внутренние незаразные болезни животных / И.П. Кондрахин, Г.А. Таланов, В.В. Пак. – [Текст] //. М.: КолосС, 2003. –С. 46113. Уиллард, М. Лабораторная диагностика в клинике мелких домашних животных / М. Уиллард, М. Твердтен, Г. Торнвальд. –[Текст] // М.: Аквариум, 2004. – С. 43014. Середа, С.В. Микроскопическое исследование в диагностике заболеваний мелких домашних животных / С.В. Середа. –[Текст] //. М.: Зоомедлит, 2009. –С. 96